细胞活力是一个群体中健康活细胞比例的指标,反映的是细胞健康的总体情况。细胞活力的测定旨在评估细胞的物理和代谢状态,以确定治疗或培养条件对细胞稳态的影响;通常采用CCK-8、MTT等方法进行检测。
1.实验原理
CCK-8是一种基于WST-8[2-(2-甲氧基-4-硝基苯基)-3-(4-硝基苯基)-5-(2,4-二磺酸苯)-2H-四唑单钠盐]而广泛应用于测定细胞增殖或细胞毒性的一种高灵敏度、无放射性的比色检测方法。其原理是WST-8在电子载体作用下被细胞线粒体中的脱氢酶还原为具有高度水溶性的黄色甲瓒产物(Formazan dye),生成的甲瓒产物的数量与活细胞的数量成正比;细胞增殖越多越快,则颜色越深;细胞毒性越大,则颜色越浅。对于同样的细胞,颜色的深浅和细胞数目呈线性关系。因此可利用这一特性直接进行细胞增殖和毒性分析。
2.实验原理图
2.实验步骤
2.1 细胞铺板处理
2.1.1 稳转细胞胰酶消化,细胞计数,调整细胞浓度为2×104个/mL;
2.1.2 在96孔板上接种2×103个/孔的细胞,将培养板在培养箱中培养24 h;
2.1.3 根据需要处理细胞后,分别在不同时间进行CCK8检测。
2.2 CCK8检测细胞活力
2.2.1 细胞接种1 d,4 d,7 d时向24孔板中每个孔中加入CCK-8溶液;
2.2.2 将培养板置37 ℃培养箱孵育1 h;
2.2.3 完成后,将反应液转移至96孔板中;
2.2.4 酶标仪设定450 nm后检测吸光度,记录数据。
3.实验结果示例
不同血清浓度培养条件下OD450检测结果
组别 | 细胞悬液体积/μL | 血清浓度/% | OD450 |
A | 200 | 10 | 1.91 ± 0.39 |
B | 100 | 10 | 1.75 ± 0.06 |
C | 100 | 5 | 1.51 ± 0.10 |
D | 50 | 5 | 1.23 ± 0.19 |
参考文献
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